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AbMole细胞实验必备：G-418--构建稳定转染细胞株的关键分子
G-418（遗传霉素，AbMole，M2719）一种在分子生物学和细胞生物研究中常用且重要的工具分子，多用于细胞转染后的筛选、转基因动植物研究等实验。 在真核细胞转染或者原核转化中，实验人员可以选择Neo基因（编码氨基糖苷磷酸转移酶，APH）作为筛选标记，与目的基因串联一起进行转染/转化。 成功转染的细胞即可获得对 G-418 的抗性。 G418结构式二、G-418用于稳定转染细胞筛选在细胞生物学研究中，稳定转染细胞系的建立是深入研究基因功能、信号通路等的重要手段。 G-418（遗传霉素，AbMole，M2719）通过其抗性筛选作用，可以帮助筛选出稳定表达外源基因的阳性细胞株，这些细胞株在后续的细胞扩增和制备过程中能够保持其遗传稳定性。
21110编辑于 2025-12-01- 来自专栏生命科学
细胞转染小秘籍 | MedChemExpress
先前小 M 已经介绍过各种转染方法的优缺点了 (见 “六合心法” 有三式~)，在传统的转染方法 (如磷酸钙法、电穿孔法、病毒法等) 转染效率低、细胞毒性大、重复性差的情况下，以 Lipo3000 为主的阳离子脂质体转染试剂脱颖而出 但对于一些难转染细胞，建议刚开始转染前使用无血清培养基，至少转染一小时后再换成有血清培养基。小白: 那培养基中含有抗生素会对细胞转染有影响吗？小M: 可添加抗生素。 如有必要，可在 1:1-1:5 的范围内调整以优化转染效果。最佳转染条件因不同的细胞类型和培养条件而有所区别，转染前，可做预实验摸索最佳转染比例。 小M: 此外，除了转染质粒 DNA，我们的转染试剂也适用于 RNA 转染~小白: 那可以同时转染两个质粒吗？小M: 当然也可以啦！ 宿主范围广MCE PolyFast Transfection Reagent 对多种常见细胞具有高水平转染效率，也可转染一些原代细胞和难转染细胞。
48310编辑于 2023-02-15 基因过表达细胞系构建与应用全攻略 | 稳定转染技术 | 功能验证方法 | 细胞模型构建 | 蛋白表达优化
相较于瞬时转染，稳定过表达细胞系具有表达稳定性高、细胞群体均质性好、实验结果可重复性强等技术优势，已成为基因功能研究、信号通路解析和药物靶点验证等领域的标准化研究工具。 技术原理基因过表达系统的核心原理是将外源基因整合至宿主细胞基因组中，使其在细胞分裂过程中稳定遗传。 第二阶段：细胞转染与筛选选取适宜宿主细胞（如HEK293、CHO或特定细胞系），采用脂质体转染、电穿孔或慢病毒转导等方法导入表达载体。转染48-72小时后，添加相应抗生素进行筛选。 第五阶段：稳定性评估将候选细胞系在不含筛选压力的培养基中连续传代15-30代，定期检测目标基因表达水平。表达下降不超过30%的细胞系可视为稳定表达株。 提高翻译效率表达框架优化：5'-UTR和3'-UTR序列影响表达稳定性常见问题处理：表达沉默：更换载体骨架或添加绝缘子元件细胞毒性：采用诱导型表达系统表达不稳定：优化筛选压力维持策略应用领域基础研究应用
33010编辑于 2026-01-13【辰辉创聚生物】CHO/HEK293抗体表达平台｜高效哺乳动物细胞表达｜快速重组抗体生产
CHO表达系统已经被大量应用于抗体生产，主要因为它表达稳定，适合规模化制造。HEK293表达系统则更灵活，转染效率高，适合做抗体快速表达和初期筛选。 瞬时转染技术的优势瞬时转染是快速表达重组抗体的常用方法。通过把抗体基因片段导入细胞，不用建立稳定株，就能在几天内获得大量蛋白。这对于抗体快速表达和功能验证很有帮助。 尽管表达时间短，但如果优化转染条件，依然可以获得不错的产量。稳定细胞株构建相比瞬时转染，稳定细胞株构建更适合长期抗体生产。过程包括载体整合、筛选单克隆细胞、表达验证等。 抗体表达平台依托CHO和HEK293等哺乳动物细胞表达系统，结合瞬时转染和稳定细胞株构建技术，可以满足从抗体快速表达到大规模生产的不同需求。 A: CHO表达系统适合大规模、稳定的抗体生产，蛋白质修饰更符合工业化标准；HEK293细胞则转染效率高、表达速度快，常用于抗体快速表达和初步功能验证。选择时需根据项目阶段和需求确定。
39000编辑于 2025-08-06NK+HEK293细胞双杀！AD600150玩转Trim28-Eomes互作实验
本文章主要研究方向研究方向：本文主要研究了热休克蛋白gp96（也被称为Hsp90B1或Grp94）在调节自然杀伤（NK）细胞发育、成熟和功能中的作用，特别是通过稳定转录因子Eomesodermin（ • HEK293细胞： ◦ 转染Flag-gp96和His-Eomes（验证gp96对Eomes稳定性的调控）。 转染实验数据及贡献分析实验数据定位1. 原代NK细胞转染Eomes（Fig.5E）： ◦ 实验内容：通过转染Eomes过表达质粒，恢复gp96缺陷型NK细胞中DX5的表达。 HEK293细胞转染gp96与Eomes（Fig.6G）： ◦ 实验内容：过表达gp96增强Eomes的蛋白稳定性。 5.转染试剂的核心贡献• 高效递送能力：成功转染难转染的原代NK细胞（转染效率>60%），为功能挽救实验提供技术保障。
21110编辑于 2025-05-27【辰辉创聚生物】稳定细胞系构建｜蛋白表达细胞株｜高表达细胞株
在构建过程中，选择合适的宿主细胞、表达载体设计、转染方法、筛选单克隆细胞株及表达优化，是保证蛋白表达细胞系质量的关键步骤。 2. 宿主细胞与表达系统 使用最多的宿主细胞包括CHO细胞系构建和HEK293稳定表达系统，两者均为哺乳动物细胞，具备良好的蛋白折叠和人源化糖基化能力，广泛应用于定制细胞系和转染稳定细胞株开发。 表达载体通常设计为双基因表达系统，确保轻链与重链同步表达，搭配强启动子和筛选标记，提高转染效率及筛选成功率。 4. 转染与筛选技术 转染技术主要分为瞬时转染和稳定转染两类。 稳定转染通过抗性药物筛选，获得持续表达的细胞株。筛选阶段重点在于利用药物筛选结合单克隆挑选，确保获得单克隆细胞株。 现代技术结合自动化筛选平台，加速高效筛选高表达细胞株，显著提升筛选效率与表达水平。 A:基因整合细胞系表达稳定，适合长期培养和生产；瞬时表达周期短，但表达不稳定。 Q5：转染稳定细胞株有哪些常用方法？ A:常见方法包括脂质体转染、电穿孔及病毒介导转染等。
39210编辑于 2025-09-18哺乳动物重组蛋白表达｜HEK293/CHO细胞蛋白表达服务｜哺乳表达
细胞转染细胞转染即将构建好的载体导入细胞。常用的转染方法有：①脂质体转染操作简便，适合小规模实验；②PEI转染性价比高，适合中等规模；③电转染适合难转染的细胞。4. 蛋白表达一般情况下，细胞转染后48-72小时即可收获蛋白。对于难表达的蛋白，可以尝试低温培养，例如30-33℃。5. 蛋白收获分泌表达的蛋白可直接收集培养上清，通过离心去除细胞碎片即可。 HEK293细胞转染效率高，适合快速小规模表达；CHO细胞则更适合需要长期稳定表达和大规模生产。Q3：影响哺乳动物蛋白表达量的关键因素有哪些？ A：主要影响因素包括：载体启动子强度、基因序列优化程度、转染效率、细胞培养条件和诱导表达参数等。需要系统优化各个环节才能获得理想表达量。Q4：瞬时表达和稳定表达各有什么优缺点？ A：瞬时表达周期短（1-2周），适合快速获取蛋白质；稳定表达需要较长时间建立（4-8周），但表达更稳定持久。Q5：如何提高表达蛋白的可溶性和生物活性？
43410编辑于 2025-07-16【辰辉创聚生物】一文读懂基因过表达细胞系基因 | 过表达细胞系构建全流程解析 | 稳定转染技术 | 载体设计优化
整合后的外源基因随细胞分裂传递至子代细胞，形成稳定的遗传特性。 细胞培养质量控制在转染前需对细胞状态进行严格评估，包括细胞形态观察、生长曲线测定和支原体检测。细胞传代次数应控制在适当范围内（通常不超过20代），以保证细胞状态的稳定性。 转染前24小时将细胞以适宜密度接种，确保转染时细胞处于对数生长期，达到最佳转染效率。基因导入与筛选流程转染技术选择与优化根据细胞类型和研究需求，可选择脂质体转染、电穿孔或病毒转导等方法。 表达验证与稳定性评估蛋白表达验证采用Western blot技术检测目标蛋白表达，需设立未转染细胞和空载体转染细胞作为阴性对照。对于分泌型蛋白，可使用ELISA法检测培养上清中的蛋白浓度。 稳定性测试方法将候选细胞系在常规培养基中连续传代培养，每5代取样检测目标基因表达水平。稳定性测试通常持续20-30代，期间需监测细胞生长状态和形态变化。
21510编辑于 2026-01-16稳定细胞系构建原理与流程解析
一、稳定细胞系的基本原理稳定细胞系的核心是基因的基因组整合：基因组整合目标基因通过各种方法插入宿主细胞的染色体中，而不是停留在细胞质内（如瞬时转染）。 通过筛选和单克隆分离，可以获得稳定、高表达的克隆，保证蛋白产量和一致性。长期表达与遗传稳定性成功整合的基因在多代传代中仍能持续表达。避免了瞬时转染中蛋白表达随时间衰减的问题。 二、稳定细胞系构建的流程稳定细胞系的开发一般包括以下几个核心环节：1. 设计与载体构建目标基因优化：提高翻译效率，添加信号肽和标签。 基因递送与整合转染/转导方法：化学转染：适用于多数易转染细胞电穿孔：适合难转染或悬浮细胞病毒载体（慢病毒、腺病毒等）：高效率，适合非分裂细胞整合方式：随机整合：快速，但表达水平受染色体位置影响位点特异性整合 通过标准化的流程和严谨的技术控制，稳定细胞系能够为研究和产业化提供可靠、可重复、长期稳定的蛋白生产平台。
12310编辑于 2026-01-14- 来自专栏生命科学
MCE | 抗生素抗性筛选
转染与抗生素筛选 转染 (Transfection) 是真核细胞主动或被动导入外源核酸片段而获得新表型的过程，引入的遗传物质 (DNA 和 RNA) 稳定或暂时存在于细胞中，据此，转染可分为稳定转染和瞬时转染 稳定转染：引入的遗传物质常带选择性标记基因，它们被整合到宿主的基因组中，即使在宿主细胞分裂传代后也能维持转基因的表达。即稳转的细胞系通过一些选择性标记反复筛选，得到稳定转染的同源细胞系。 关于抗生素抗性筛选：携带抗生素抗性标记的载体进入细胞，转染成功的细胞在含有抗生素的选择培养基中生长，而不带有抗性基因的细胞会被抗生素杀死，最后获得稳定的带抗性细胞株。 因此，抗生素抗性标记是区分稳定转染和瞬时转染的有效方法。 在原核/真核生物转染实验中常用的抗生素有很多，例如嘌呤霉素、G418、卡那霉素、四环素和博来霉素等等。 编码嘌呤霉素抗性的基因——嘌呤霉素 N-乙酰转移酶 (PAC) 的 pac基因，是从Streptomyces alboniger中分离出来的，早在 1988 年，PAC 就首次被用作分离稳定转染的哺乳动物细胞系的显性选择标记
65620编辑于 2023-03-10 【辰辉创聚生物】稳定细胞系构建 | 稳定株开发服务 | 高表达克隆筛选
所谓稳定细胞系，是指通过遗传整合外源基因的方式，使细胞在长期传代过程中持续稳定表达目标蛋白（或其它功能元件）的细胞系。 构建稳定细胞系的核心环节包括外源基因载体构建、有效转染、筛选与克隆扩增、表达持续性验证等步骤。1. 外源基因载体的基本设计与核心元件稳定表达的实现，首先依赖于外源基因载体设计的合理性。 高效转染是构建的技术基础为了将上述构建好的载体引入宿主细胞，科研上广泛采用高效转染方法。 转染效率直接影响稳定细胞系构建的效率和质量，因此在转染环节选择适合的方案、适宜的转染试剂是关键。3. 抗性筛选与单克隆挑选转染后细胞通常是多种状态混合群体，其中只有一部分细胞完成了外源基因的整合。 表达稳定性与验证稳定细胞系的构建完成后，还需对外源基因的表达进行验证，并确认其长期稳定性。
11700编辑于 2026-01-26【辰辉创聚生物】哺乳动物瞬时蛋白表达|CHO细胞蛋白表达|HEK293细胞蛋白表达
相比于稳定表达系统，TGE省略克隆筛选等冗长步骤，具备快速、高效的优点，尤其适用于早期药物研发、抗体表达、新型抗原生产等应用场景。 转染方法与试剂在 TGE 中，非病毒转染方法被广泛采用，其中聚乙烯亚胺（PEI）因价格低廉和操作简便而成为首选。脂质体试剂也能提供较高的转染效率，但成本相对较高。 对于难以转染的细胞，电穿孔和其他物理方法可以作为补充。在一些特定情况下，病毒载体（如腺病毒、杆状病毒）也被用于辅助转染，以提高转染效率和基因导入量。4. 加入增强子和转录后调控元件（如 WPRE）可进一步提高 mRNA 的稳定性和翻译效率，使目标蛋白的表达量增加数倍甚至数十倍。2. 此外，添加融合标签（如 Fc 片段、His 标签）不仅能增强蛋白稳定性，还能简化纯化过程，从而缩短生产周期。3.
43910编辑于 2025-09-10【辰辉创聚生物】科研人必知：293F与HEK293细胞在蛋白表达中的不同“超能力”
无论是基础研究所需的信号通路蛋白、结构生物学研究所需的膜蛋白，还是抗体、疫苗、酶类等应用型蛋白药物，背后都离不开一个高效、稳定的蛋白表达系统。 由于转染效率高、培养条件相对宽松，它很快成为了分子生物学研究中的明星细胞系。 高转染效率：尤其是在脂质体转染、电转或PEI转染方法中，HEK293表现出显著优势。广泛的适用性：无论是瞬时表达还是稳定细胞系的构建，HEK293都能胜任。 2. 293F：产量与应用兼顾单克隆抗体早期研发：利用293F瞬时转染，可在几天内获得大量抗体用于动物实验或体外药效学评估。 转染方法选择：PEI转染在293F中常用，成本低且效率高。稳定细胞系构建：在需要长期表达的场景下，可考虑在HEK293中构建稳定株，再移植到悬浮培养体系。
49510编辑于 2025-09-23【辰辉创聚生物】基因过表达细胞系 | 稳定过表达开发 | 高表达克隆筛选
外源基因引入与高效转染将构建完成的过表达系统引入宿主细胞，是实现基因过表达的首要步骤。科研实验中，高效转染是确保足够比例细胞获得外源基因的技术前提。 常见的转染方式包括：脂质体介导转染：通过阳离子脂质体与核酸形成复合物，被细胞吞噬后释放至胞内；电穿孔法：利用短暂电脉冲在细胞膜上形成可逆孔洞，使DNA直接进入细胞；病毒介导转导：借助病毒载体将目的基因高效导入细胞并实现基因组整合 在这些技术中，转染试剂的选择和使用对转染效率、细胞状态以及后续筛选效果具有直接影响，是过表达细胞系构建中不可忽视的技术环节。3. 稳定过表达与抗生素筛选根据外源基因在细胞内存在形式的不同，基因过表达可分为瞬时表达和稳定表达。为了获得可长期传代、表达一致的细胞模型，科研中通常构建稳定过表达细胞系。 其基本原理是：外源表达单元中包含抗性基因；转染后向培养体系中加入对应抗生素；未成功整合外源序列的细胞因缺乏抗性而被淘汰；存活细胞群体即为候选过表达细胞群。
10710编辑于 2026-02-03- 来自专栏技术学习
筛出核心基因的下一步
转染效率依赖细胞类型，对原代细胞等难转染细胞效果较差。 适用情景 初步验证基因是否与表型相关。 机制研究中需要快速敲低。 不适合长期实验（分化、慢性疾病模型）。 慢病毒转染 (Lentiviral OE/shRNA） 原理 利用慢病毒将外源基因（过表达）、shRNA（敲低）稳定整合进细胞基因组，实现长期、稳定基因调整。 优点 表达/敲低稳定：适合长期实验（分化、增殖、动物成瘤模型）。 可在难转染的细胞（免疫细胞、原代细胞）中发挥作用。 适合体内实验（肿瘤皮下瘤/转移模型）。 shRNA 效率有时不如 CRISPRi 稳定。 过表达往往是“非生理”水平，可能导致假阳性结果。 适用情景 需要长期稳定基因改变。 siRNA 不够稳定或细胞难转染时。 关键注意点 多个细胞克隆或 pool 实验都要验证。 控制表达水平，避免假阳性。 shRNA 一定要至少使用2条，严格做 off-target 控制。
17410编辑于 2025-12-24 【辰辉创聚生物】哺乳动物细胞蛋白表达|HEK293蛋白表达|CHO细胞蛋白表达|哺乳蛋白瞬时表达
HEK293（人胚肾）系列细胞HEK293 及其衍生系（如 HEK293E、HEK293T）因转染效率高、表达速度快，被广泛用于瞬时表达。其优势在于适合快速验证蛋白功能、小规模制备和结构分析。 瞬时基因表达（TGE）系统操作速度快，无需筛选稳定细胞株，适用于初期功能研究或小规模蛋白生产。宿主为 HEK293 系列，转染效率高，适应无血清悬浮培养。 稳定表达系统（SGE）需构建稳定整合表达载体并筛选克隆，具有长期稳定表达的优势，适合大规模生产。CHO细胞常通过DHFR基因共转染策略进行选择和抗体放大。3. 转染方式瞬时：使用PEI等化学试剂在HEK293E进行PEI转染。稳定：CHO细胞中使用DHFR共转染选择、单克隆筛选。QMCF：通过保留质粒快速建立表达体系。3. 合理选择宿主细胞（如 HEK293、CHO），优化载体元素与转染方式，可满足从小规模实验到工业生产的不同需求；借助稳定与瞬时表达策略、规模化技术与元件优化，不断提升表达效率与蛋白质量。
36910编辑于 2025-08-27- 来自专栏生命科学
实验操作 | 质粒构建、转化、提取、鉴定、转染、测定（完整版）| MedChemExpress (MCE)
今天我们就来聊聊质粒提取那些事儿~质粒：一个小型环状双链 DNA 分子，存在于细菌染色体外，能独立复制并稳定遗传。 (2) 阴性对照组 (NC)：SH-SY5Y 细胞转染阴性对照质粒。 (3) 过表达组 (PC)：SH-SY5Y 细胞转染过表达质粒。 3转染细胞铺板 24 h 后，按照 Lipofectamine 说明书用其进行转染。 转染 48 h 后，荧光显微镜下观察其 GFP 的表达情况及统计其转染效率 (对明场及暗场荧光细胞计数，得：转染效率 = 暗场荧光细胞个数 / 明场细胞个数；也可通过流式等观察统计其转染情况)。 结果显示，阴性对照组和 Parkin 过表达组细胞内可观察到较多的绿色荧光蛋白表达，而正常组细胞没有观察到，则质粒成功转染至细胞内。图 5. 转染后荧光显微镜下观察绿色荧光蛋白的表达[1]。A.
1.8K10编辑于 2024-06-28 - 来自专栏芒果先生聊生信
HEK293细胞系，最全总结
293T细胞容易转染，用磷酸钙、PEI或脂质体转染，效率均可达90%以上。除用于基因表达及蛋白生产外，还用于慢病毒、逆转录病毒及腺病毒的包装。 ? 293T/17细胞是293T细胞中共转染pBND和pZAP质粒而获得的具有G418耐受的细胞系。该细胞系仍保留高转染效率的特点。 293E细胞是293-H细胞中插入EBNA-1基因的细胞系，该基因能够稳定表达EBV病毒的EBNA1蛋白，含有EBV复制起点（oriP）的重组表达质粒。 293FTM细胞来源于Flp-InTMT-RETM293细胞，该细胞系中稳定转染了ecotropic receptor质粒及MAPPIT (mammalian protein-protein interaction 293SG是293S细胞用甲基磺酸乙酯诱变处理，蓖麻毒素选择后再转染pcDNA6/TR质粒得到耐受蓖麻毒素的细胞系。
7.4K20发布于 2020-08-28 【辰辉创聚生物】报告基因细胞系构建与应用技术解析
报告基因细胞系是通过将报告基因稳定整合到宿主细胞基因组中，构建能够实时监测细胞信号通路活性的工程化细胞模型。 选择时需考虑细胞的转染效率、信号通路完整性、增殖特性和应用场景。对于药物筛选应用，通常选择与疾病相关的细胞系，如肿瘤细胞系或原代细胞。 转染与筛选方法采用慢病毒转导可提高转染效率并实现稳定整合，病毒滴度需通过预实验优化确定。脂质体转染适用于部分细胞系，需优化DNA与转染试剂比例。 转染后48小时开始施加筛选压力，根据载体携带的抗性基因选择相应抗生素。筛选过程中需定期观察细胞状态，适时调整抗生素浓度。筛选周期通常持续2-3周，直至获得稳定的细胞池。 稳定性测试将细胞系在常规培养基中连续传代培养，定期检测本底信号和诱导信号。稳定细胞系应在20代内保持信号响应的一致性。冻存复苏后需重新验证系统性能，确保实验结果的可靠性。
10810编辑于 2026-01-12- 来自专栏芒果先生聊生信
慢病毒：肿瘤研究的利器
常见的基因递送载体有质粒、慢病毒、腺病毒、腺相关病毒等，其中慢病毒由于高感染效率、可感染范围广、可稳定整合的优点，成为最常用的基因递送载体，既可以感染细胞验证基因功能，又可以通过构建稳转细胞系进行成瘤和癌细胞转移等实验 （来自吉满生物公众号） 常用的293T细胞转染效率就很高，但是大多数细胞转染效率通常比较低。据芒果本人经验，慢病毒在构建过表达、干扰和敲除方面都是效率极高的，甚至可以用于假病毒包装。 转染体系：pLenti-CAS9-puro，pSPAX2, pMD2G按照4：3：1的比例（2μg，1.5μg和0.5μg）混匀，再与转染试剂混匀加入前天准备好的293T细胞中，钙转或PEI转染，293T 转染18~24小时后，更换为新鲜培养基。 病毒收集：转染后 48 小时收集病毒上清，0.45 μm滤器过滤，2mL EP管中，4℃，3000g/min 离心 5分钟。 感染后48小时，换上含适当浓度的puromycin 的新鲜完全培养液，筛选稳定转导的细胞株。 每2-3天换含puromycin完全培养液一次，至对照组细胞死光，可进行后续操作。
2K10发布于 2020-08-04
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